Como Escolher Consumíveis para PCR?

PCR (Reação em Cadeia da Polimerase) é uma das técnicas mais utilizadas em biologia molecular e experimentos de diagnóstico. Sua precisão depende de múltiplos fatores, incluindo o sistema de reação, a configuração do instrumento e a qualidade dos consumíveis. Os consumíveis de PCR não são apenas recipientes de reação, mas também afetam diretamente a condução de temperatura, a perda por evaporação, a uniformidade da reação e a reprodutibilidade dos resultados. Escolher os consumíveis adequados pode melhorar significativamente as taxas de sucesso experimental e reduzir erros e custos.


1. O que são consumíveis de PCR?

Consumíveis de PCR referem-se a itens de laboratório descartáveis projetados especificamente para fluxos de trabalho de PCR. Esses itens são geralmente fabricados em polipropileno (PP) de alta pureza e são produzidos para suportar ciclos térmicos repetidos, mantendo a estabilidade química e a integridade da amostra. São componentes essenciais em biologia molecular, diagnósticos clínicos, testes genéticos e pesquisa em ciências da vida.

Por que os consumíveis de PCR são geralmente feitos de polipropileno (PP)?

Os consumíveis de PCR são geralmente feitos de polipropileno (PP) porque é um material biologicamente inerte, sua superfície não adere facilmente a biomoléculas, e possui boa resistência química e tolerância à temperatura (pode ser autoclavado a 121 graus Celsius e suporta mudanças de temperatura durante os ciclos térmicos). Esses materiais geralmente entram em contato direto com reagentes ou amostras, portanto, são necessários materiais de alta qualidade e boas técnicas de processamento durante a produção.

2. Tipos comuns de consumíveis de PCR

  • Tubo de PCR Individual

Principais especificações: Tubos de PCR de 0,2 ml (tampa plana/tampa abobadada); Tubos de PCR de 0,5 ml (tampa plana).

Tampa plana Fornece transmissão precisa do sinal de fluorescência para qPCR; facilita a rotulagem. Tampa abobadada Entra em contato com a tampa aquecida do instrumento de PCR, reduzindo a deformação do tubo de reação induzida pela pressão; no entanto, afeta a transmissão do sinal de fluorescência e não pode ser usada em experimentos de qPCR.

  • Tiras de tubos PCR

Principais especificações:

Tubos de PCR em tira de 4 (transparentes). Tiras de 4 tubos de PCR de 0,1 mL com tampas individuais são especialmente projetadas para instrumentos QIAGEN®/Corbett Rotor-Gene®. 

Tubos de PCR em tira de 8 (tubos de PCR em tira com tampas fixas/tubos de PCR em tira de 8 com tampas individuais; branco/transparente). 

Item Tubos em tira de 8 com tampas fixas Tubos em tira de 8 com tampas individuais
Estrutura Corpo do tubo e tampa são conectados Corpo do tubo e tampa são separados
Instruções de operação Tubos individuais podem ser abertos/fechados um a um Toda a fileira pode ser tampada simultaneamente
Tampa anti-perda Não é fácil de perder A tampa é fácil de perder
Eficiência experimental **Média** Boa
Controle de evaporação Boa Melhor
Adequado para alto rendimento Média Muito adequado

Tubos de PCR em tira de 12. 

Os tubos de PCR estão disponíveis principalmente em três cores: transparente, fosco e branco. A cor do corpo do tubo não afeta a amplificação do DNA. No entanto, em experimentos de PCR quantitativo por fluorescência, em comparação com tubos transparentes, os tubos foscas e brancos reduzem a perda de fluorescência devido à menor transmitância de luz, permitindo que mais sinais sejam refletidos de volta ao módulo de detecção de fluorescência, aumentando assim a relação sinal-ruído. Além disso, as paredes brancas e foscas dos tubos podem prevenir melhor a interferência de sinal entre os poços, minimizando variações em experimentos repetidos.

O módulo de detecção de fluorescência está localizado acima do módulo de aquecimento (leitura de sinal superior): tubos transparentes, foscas e brancos podem ser usados, mas tubos foscas e brancos são mais recomendados; relação sinal-ruído: branco > fosco > transparente; por exemplo, com instrumentos de PCR em tempo real Bio-Rad CFX ou Roche 480, tubos de PCR brancos são recomendados. O módulo de detecção de fluorescência está localizado abaixo do módulo de aquecimento (leitura de sinal inferior ou lateral): apenas tubos transparentes podem ser usados.

  • Placas de PCR

Placas de PCR sem skirt: Sem painéis de borda, compatíveis com a maioria dos instrumentos de PCR e qPCR, fáceis de cortar, mas oferecem baixa estabilidade de pipetagem e requerem um suporte para placa; não adequadas para aplicações automatizadas.

Semi-skirted Placas de PCR: Disponíveis em várias cores, destacáveis, facilitam a classificação e gerenciamento de amostras em experimentos de alto rendimento, compatíveis com etiquetas ou códigos de barras e aplicações automatizadas, e oferecem boa estabilidade de pipetagem.

Full-skirted Placas de PCR: Possui bordas com a altura total da placa, adequada para aplicações laboratoriais automatizadas, compatível com etiquetas e códigos de barras, oferece boa resistência mecânica, pode ser usada com instrumentos de PCR com módulos salientes, proporciona alta estabilidade de pipetagem e facilita o manuseio e movimento por garras robóticas.

3. Como o volume do tubo de PCR afeta os resultados da amplificação?

  • Volume Morto

Quando o mesmo volume de solução de reação é adicionado, o espaço acima da solução de reação (também conhecido como volume morto) em um tubo de 0,1 ml é significativamente menor em comparação com um tubo de 0,2 ml, resultando em menos espaço desperdiçado. Durante o experimento, à medida que o módulo de aquecimento do instrumento de PCR aquece gradualmente, o vapor de água gerado dentro do tubo entra no espaço acima da solução de reação. O tubo de 0,2 ml acomoda mais vapor de água, levando à concentração da solução de reação. As mudanças na composição da solução de reação afetam então a condutividade térmica e a temperatura do líquido, impactando assim a estabilidade e precisão dos resultados experimentais. Por outro lado, para um tubo de 0,1 ml, o volume morto é bastante reduzido, resultando em uma composição de reação mais estável e melhor reprodutibilidade.

  • Condensação nas Paredes do Tubo

Como o vapor de água no tubo de 0,2 ml tem que percorrer uma distância maior através da porção exposta antes de atingir a tampa aquecida no topo, isso inevitavelmente leva à formação de condensação nas paredes do tubo. Isso é prejudicial para experimentos de PCR quantitativo por fluorescência. As gotículas de água condensada atuam como pequenas lentes, causando refração e dispersão da fluorescência, degradando e atenuando a consistência do sinal do detector e reduzindo a sensibilidade.

Como os tubos de 0,1 ml são totalmente envolvidos pelo módulo de aquecimento do instrumento de PCR, apenas uma porção muito pequena fica exposta fora do módulo de aquecimento, e a distância até a tampa aquecida também é menor. Isso reduz bastante a formação de condensação nas paredes do tubo e a possibilidade de contaminação por condensação, resultando em dados experimentais mais precisos.

  • Taxa de Captura de Fluorescência

Devido aos custos cada vez mais altos dos reagentes, o volume de reação nos projetos experimentais está se tornando cada vez menor, sendo mais comum de 20-25 µl. Mesmo em experimentos de PCR quantitativo, não é incomum ver usuários trabalhando com 5-10 µl, o que é mais que suficiente para tubos de 0,1 ml; até mesmo adicionar 50 µl é facilmente gerenciável.

Para instrumentos de PCR quantitativo por fluorescência de detecção superior, no mesmo volume, quanto menor a altura do tubo de PCR, menor a distância que a luz percorre desde a luz de excitação que entra na solução de reação até a fluorescência gerada ser recebida pelo detector (ou seja, mais curto o caminho óptico). Isso resulta em uma maior taxa de captura de fluorescência pelo detector e melhores resultados experimentais.

Resumo

Escolher os consumíveis de PCR adequados requer equilibrar as necessidades experimentais, a compatibilidade com o instrumento, o desempenho térmico, as propriedades ópticas, a integridade da vedação, o controle de contaminação e as considerações de fluxo de trabalho. Decisões informadas levam a ensaios mais confiáveis, redução de falhas e rendimento laboratorial eficiente.

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