lamelle
Lamelle de verre pour lame de microscope
lamelles

Lamelle SDLABIO

La lamelle SDLABIO est un consommable clé utilisé conjointement avec les lames en microscopie. Elle recouvre les échantillons, protège le spécimen et l'objectif du microscope, et améliore la qualité d'image. Les lamelles sont généralement constituées de verre optique ou de quartz hautement transparent, avec une épaisseur uniforme et une surface lisse. Elles minimisent la distorsion optique et garantissent la clarté et la précision lors de l'observation microscopique.

Lamelle à vendre :

18×18/20×20/22×22/24×24/24×32/24×50/24×60.

QCM : 1 CARTON.  

Demander un devis

Lamelles de microscope à vendre

Réf. Spécification Spécifications CTN Poids Dimensions CTN
GBP-18×18 18×18 100 pièces/boîte, 10 boîtes/feuille d'aluminium, 50 feuilles d'aluminium/carton 9.5 33*20*28
GBP-20×20 20×20 100 pièces/boîte, 10 boîtes/feuille d'aluminium, 50 feuilles d'aluminium/carton 11 33*20*28
GBP-22×22 22×22 100 pièces/boîte, 10 boîtes/feuille d'aluminium, 50 feuilles d'aluminium/carton 12.5 37*20*28
GBP-24×24 24×24 100 pièces/boîte, 10 boîtes/feuille d'aluminium, 50 feuilles d'aluminium/carton 14 37*20*28
GBP-24×32 24×32 100 pièces/boîte, 10 boîtes/feuille d'aluminium, 50 feuilles d'aluminium/carton 19 47*20*28
GBP-24×50 24×50 100 pièces/boîte, 10 boîtes/feuille d'aluminium, 30 feuilles d'aluminium/carton 17 41*20*28
GBP-24×60 24×60 100 pièces/boîte, 10 boîtes/feuille d'aluminium, 30 feuilles d'aluminium/carton 20 47*20*28

Caractéristiques de la lamelle de microscope

  • Fabriquée en verre borosilicate de haute qualité ou en verre ultra-clair, offrant une excellente transmission lumineuse et une grande propreté, prête à l'emploi sans nettoyage.
  • Surface lisse et plane assurant une répartition et une adhésion uniformes de l'échantillon, facilitant une observation et une imagerie microscopiques claires.
  • Épaisseur uniforme minimisant les interférences optiques et empêchant la fluorescence de fond supplémentaire dans les applications de microscopie à fluorescence, garantissant des résultats précis et fiables.
  • Haute dureté du verre offrant une excellente résistance aux rayures et réduisant le risque de fissures ou de casse.
  • Emballage individuel scellé avec protection par dessiccant, empêchant efficacement l'humidité, le collage, l'oxydation et la corrosion, prolongeant la durée de conservation du produit.
  • Disponible en plusieurs tailles et trois niveaux d'épaisseur standard : #1 (0,13–0,16 mm), #1,5 (0,16–0,19 mm) et #2 (0,19–0,22 mm).

FAQ sur les lamelles de verre pour microscope

Quelle est la fonction d'une lamelle ?

Une lamelle de microscope (également appelée couvre-objet) remplit plusieurs fonctions importantes en microscopie :

  • Protège l'échantillon – Elle protège les échantillons délicats des dommages, de la contamination ou du dessèchement pendant l'observation.
  • Protège l'objectif du microscope – Empêche l'objectif d'entrer directement en contact avec l'échantillon ou le milieu liquide, réduisant ainsi le risque de rayures ou de contamination.
  • Améliore la qualité de l'image – Crée une surface plane et uniforme qui réduit les distorsions optiques et permet à la lumière de passer plus uniformément pour une imagerie plus nette.
  • Maintient la stabilité de l'échantillon – Maintient l'échantillon en place, empêchant tout mouvement sous le microscope.
  • Offre une épaisseur constante – Une épaisseur standardisée (par exemple, lamelles n° 1,5 d'environ 0,17 mm) assure une mise au point correcte et une résolution optimale avec les objectifs à fort grossissement.

Dans la pratique de laboratoire, les lamelles sont souvent utilisées avec lames de microscope, des colorants et des milieux de montage pour préparer des échantillons permanents ou temporaires destinés à l'observation.

Un nettoyage approprié des lamelles est important pour obtenir des résultats de microscopie clairs. Voici un guide étape par étape :

1. Rinçage Initial

  • Rincer la lamelle de microscope avec de l'eau distillée pour éliminer la poussière ou les débris libres.

  • En présence de résidus huileux, rincer d'abord avec de l'éthanol ou de l'isopropanol.

2. Lavage au détergent

  • Préparer une solution de détergent de laboratoire doux.
  • Immerger la lamelle de microscope et agiter doucement pour décoller les saletés.

  • Rincer abondamment à l'eau du robinet, puis à l'eau distillée pour éliminer les résidus de détergent.

3. Nettoyage en profondeur optionnel (pour les résidus tenaces)

  • Tremper dans une solution de nettoyage acide (par exemple, un mélange 1:1 d'acide chlorhydrique concentré et d'eau distillée) ou dans un bain basique si les protocoles l'exigent.

  • Toujours respecter les règles de sécurité en laboratoire : porter des gants, des lunettes de protection et travailler sous une hotte aspirante.

4. Rinçage à l'alcool

  • Tremper les lamelles dans de l'éthanol à 70 %–100 % ou de l'isopropanol pour désinfecter et éliminer tout contaminant restant.

5. Séchage

  • Placer sur un tissu non pelucheux ou une grille de séchage.

  • Alternativement, sécher brièvement à la flamme (avec précaution) ou au four à basse température.

6. Stockage

  • Conserver les lamelles nettoyées dans une boîte ou un conteneur à l'abri de la poussière jusqu'à leur utilisation.

Pour les applications sensibles (par exemple, la microscopie à fluorescence ou la culture cellulaire), une lamelle de microscope peut également être stérilisée par autoclavage ou irradiation UV après le nettoyage.

1. Préparation

  • Choisir la bonne lamelle de microscope : L'épaisseur standard est de 0,13 à 0,17 mm (n° 1,5) pour l'imagerie à fort grossissement.
  • Stériliser les lamelles de verre pour microscope : Autoclaver ou tremper dans de l'éthanol à 70 %, puis sécher à l'air dans un environnement stérile (poste de sécurité biologique).

  • Traitement de surface (optionnel) : Certaines cellules nécessitent une adhésion renforcée. L'enrobage des lamelles avec de la poly-L-lysine, de la fibronectine ou de la gélatine peut améliorer la fixation cellulaire.

2. Placement dans le récipient de culture

  • Placer la lamelle de microscope stérilisée dans boîtes de culture conventionnelles, des plaques multipuits ou des boîtes de Pétri.

  • S'assurer qu'elles sont bien à plat contre le fond pour éviter une croissance cellulaire inégale.

3. Ensemencement des cellules

  • Préparer une suspension de cellules uniques de la lignée cellulaire souhaitée.
  • Ajoutez soigneusement les cellules sur les lamelles à la densité appropriée pour votre expérience. Trop dense : les cellules se chevauchent et affectent l'imagerie. Trop clairsemé : les cellules risquent de ne pas bien adhérer.

  • Faites doucement tourner la plaque pour répartir les cellules de manière homogène.

4. Incubation

  • Incuber les cellules dans des conditions standard (par exemple, 37°C, 5% de CO₂ pour les cellules mammifères).
  • Laisser les cellules adhérer pendant plusieurs heures à toute une nuit, selon le type cellulaire.

  • Changer ou ajouter du milieu de culture si nécessaire sans déranger les lamelles de microscope.

5. Surveillance et Croissance

  • Vérifier les cellules au microscope inversé pour s'assurer d'une adhérence et d'un étalement corrects.

  • Les cellules sont prêtes pour les applications en aval (par exemple, coloration, immunofluorescence) une fois qu'elles atteignent la confluence souhaitée.

6. Traitement Post-Culture

  • Pour la fixation : retirer délicatement le milieu de culture, rincer avec du PBS et fixer les cellules (par exemple, avec du paraformaldéhyde).

  • Pour la coloration ou l'imagerie : suivez votre protocole expérimental.

Les lamelles à bords polis sont un type spécial de verre de couverture utilisé dans les expériences de microscopie. Elles subissent un processus de polissage fin lors de la fabrication, ce qui donne une surface lisse et plane avec des bords lisses et sans angles vifs. Par rapport au verre de couverture ordinaire, les lamelles polies présentent les caractéristiques et avantages suivants :

1. Haute transparence, minimisant la distorsion optique

  • Le polissage crée une surface de verre plus lisse et plus plane, minimisant la réfraction et la diffusion de la lumière, ce qui donne des images plus nettes.
  • Sous les microscopes à fort grossissement ou à fluorescence, les détails des structures cellulaires, des coupes tissulaires et des particules minuscules sont affichés plus précisément.

2. Surface lisse empêchant les dommages à l'échantillon

  • Aucune rayure microscopique ou bavure, minimisant le risque de rayer ou d'endommager l'échantillon.
  • Ceci est particulièrement important pour les échantillons sensibles tels que les cellules vivantes et les coupes tissulaires.

3. Bords sûrs pour une manipulation plus sécurisée

  • Les bords arrondis préviennent les coupures aux doigts et améliorent la sécurité lors de la manipulation expérimentale.

4. Amélioration de la Reproductibilité et de la Fiabilité Expérimentales

  • Une épaisseur uniforme (généralement 0,13–0,17 mm) garantit une mise au point et une imagerie stables lorsqu'elle est utilisée avec des objectifs de microscope standard.
  • Ceci est particulièrement important pour les expériences d'immunofluorescence, de culture cellulaire et de biologie moléculaire, garantissant des résultats cohérents.

1. Préparer la Lame et la Lamelle

  • Utiliser une lame de microscope et une lamelle propres.
  • S'assurer qu'elles sont exemptes de poussière, d'empreintes digitales ou de débris.
  • Placer votre échantillon (par exemple, liquide, cellules, coupe tissulaire) sur la lame.

2. Ajouter le Milieu de Montage ou le Liquide

  • Déposer une goutte d'eau, de tampon ou de milieu de montage sur l'échantillon.
  • S'assurer que la goutte est suffisamment grande pour couvrir la zone sous la lamelle mais pas excessive.

3. Tenir la Lamelle Correctement

  • Saisir la lamelle avec des pinces propres ou vos doigts par les bords.
  • La maintenir à un angle d'environ 45° par rapport à la surface de la lame.

4. Abaisser Lentement la Lamelle

  • Toucher d'abord un bord de la lamelle de verre avec la goutte de liquide.
  • Abaisser lentement le reste de la lamelle afin qu'elle entre en contact en douceur avec le liquide.
  • Le liquide s'étalera et chassera l'air vers le bord opposé.

5. Retirer l'Excès de Liquide

  • Si du liquide s'étale à l'extérieur de la lamelle, éponger délicatement avec du papier filtre ou un mouchoir au niveau du bord.
  • Éviter d'appuyer trop fort, ce qui pourrait casser la lamelle ou déranger l'échantillon.

6. Conseils pour Éviter les Bulles

  • Toujours abaisser la lamelle selon un angle, et non verticalement.
  • Utiliser suffisamment de milieu de montage pour remplir l'espace sous la lamelle.
  • S'assurer que la surface de la lame est plane et exempte de poussière.
  • Pour les milieux très visqueux, laisser quelques secondes pour que les bulles d'air s'échappent avant l'imagerie.
  • Contactez-nous par e-mail
  • Contactez-nous par WhatsApp

Produits similaires